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KUNDENSPEZIFISCHE PEPTIDSYNTHESE

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Peptidsynthese bis zu 150 AS

ProteoGenix kann Peptide mit bis zu 150 Aminosäuren (AS) synthetisieren.

Unbegrenzte Modifikationen

ProteoGenix bietet eine unbegrenzte Auswahl an Peptidmodifikationen.

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Ihr Projekt hat für uns Priorität – wir arbeiten, bis Sie das richtige Peptid erhalten, oder Sie zahlen nichts.

In Ihrer kundenspezifischen Peptidsynthese-Bestellung enthalten

Peptidsynthese Methode
  • Fmoc-Festphasensynthese (Standard)
  • GMP-Peptidsynthese (auf Anfrage)
Menge
  • Von 1 mg bis 1 kg
Reinheit
  • Crude bis ≥ 98%
  • TFA-Entfernung auf Anfrage
Bearbeitungszeit
  • Ab 10 Werktagen
Versand
  • Umgebungstemperatur
Peptidlieferung
  • Lyophilisiertes Peptid und entsprechender QC-Bericht
Standard-QC-Bericht
  • Aminosäuresequenz
  • Informationen zu Reinheit und Menge
  • Informationen zu Modifikationen und Konjugation
  • MS- und HPLC-Profile (außer bei crude/entsalzten Peptiden)
Zusätzliche Analysen (auf Anfrage)
  • Analyse des Nettogehalts (N%)
  • Qualitative Aminosäureanalyse (AAA)
  • Analyse des Wassergehalts
  • Ionenchromatographie (TFA, HAC)
  • Lösungsmittelrückstände (DMF, ACN)
  • Endotoxin (<1EU/MG)
Löslichkeitstest (auf Anfrage)
  • Fordern Sie einen Löslichkeitstest an, um nicht einen Teil Ihres Vorrats zu Testzwecken verwenden zu müssen. Falls Sie den Test selbst durchführen möchten, finden Sie unten unsere nützlichen Leitlinien.

Suchen Sie kundenspezifische rekombinante Peptide?

Bei ProteoGenix bieten wir neben der Standard-Fmoc-Festphasensynthese auch rekombinante Expression und Semisynthese (Verknüpfung synthetischer und rekombinanter Fragmente) an. Wenn Sie mit komplexen Strukturen arbeiten, kontaktieren Sie unser Team, um zu erfahren, wie wir Sie unterstützen können.

Erhalten Sie Peptide in höchster Qualität in 3 einfachen Schritten

Wenn Sie Expertenrat benötigen, um die Stabilität und Ausbeute Ihres synthetischen Peptids zu maximieren und die Produktionskosten niedrig zu halten, kontaktieren Sie unser Team für weitere Informationen.

Nützliche Leitlinien für die Arbeit
mit synthetischen Peptiden

Wie Sie die Löslichkeit Ihres synthetischen Peptids testen

Die häufigste Methode zur Prüfung der Löslichkeit basiert auf der Ladungsbestimmung. Bei kurzen Peptiden (bis zu 5 Aminosäuren) ist destilliertes Wasser die erste Wahl. In anderen Fällen verwenden Sie diese Anleitung:

  1. Weisen Sie jeder sauren Aminosäure (Asp/D, Glu/E) und der terminalen Carbonsäure den Wert -1 zu. Weisen Sie jeder basischen Aminosäure (Arg/R, Lys/K, His/H) sowie dem terminalen Amin den Wert +1 zu. Addieren Sie beide Werte, um die Gesamtladung Ihres Peptids zu bestimmen.
  2. Ist die Gesamtladung positiv, versuchen Sie das Peptid in Wasser zu lösen. Falls dies nicht gelingt, säuern Sie die Lösung mit 10-30 % Essigsäure an. Falls das nicht ausreicht, geben Sie TFA hinzu.
  3. Ist die Gesamtladung negativ und das Peptid enthält kein Cystein, versuchen Sie eine Lösung in Wasser. Gelingt dies nicht, geben Sie Ammoniumhydroxid hinzu.
  4. Bei einer Gesamtladung von null können organische Lösungsmittel (Methanol, Ethanol, Isopropanol oder Acetonitril) verwendet werden. Bei Bedarf etwas DMSO in Wasser verdünnt einsetzen. Ist Cystein, Methionin oder Tryptophan vorhanden, da oxidationsanfällig, DMSO durch DMF ersetzen.

So designen Sie antigenische Peptide für Impfstoffe und Antikörperproduktion

Synthetische antigene Peptide sind leistungsfähige Werkzeuge zur Generierung polyklonaler oder monoklonaler Antikörper und als Komponenten von Peptidimpfstoffen. Für diese Anwendungen müssen Peptide auf zwei Eigenschaften ausgelegt sein: Antigenität und Immunogenität. Der erste Begriff beschreibt die Fähigkeit eines Antigens, mit der Bindungsstelle eines Antikörpers zu interagieren, während Immunogenität die Auslösung einer humoralen und/oder zellulären Immunantwort bezeichnet. Für wirksame Impfstoffe und Antikörperproduktion müssen Peptide beide Eigenschaften aufweisen.

Die Antigenität kann erhöht werden durch:

  1. Auswahl hydrophiler Sequenzen: Regionen mit hydrophilen Oberflächenresten lösen eher eine Immunantwort aus.
  2. Hohe Epitope-Zugänglichkeit: Sterische Hinderung kann selbst in hydrophilen Regionen die Antikörperbindung verhindern; daher sollte das Epitop im nativen Protein leicht zugänglich sein.
  3. Optimale Peptidlänge: Um die Antigenität zu maximieren, sollten Peptide zwischen 10 und 20 AS lang sein. Kürzere Peptide (<10 AS) werden selten von Antikörpern gebunden, längere Peptide (>20 AS) können dreidimensionale Strukturen annehmen, die das native Protein nicht widerspiegeln.

Die Immunogenität kann gesteigert werden durch Kopplung synthetischer Peptide an Trägerproteine unter Berücksichtigung folgender Empfehlungen:

  1. Peptid-Orientierung: Das Peptid sollte ähnlich präsentiert werden wie im nativen Protein.
  2. Trägerproteinnatur: Das Trägerprotein enthält meist mehrere Epitopstellen, die eine Immunantwort auslösen können. Die Wahl des richtigen Carriers ist entscheidend: KLH und BSA sind die gängigsten, wobei KLH wegen Masse und Komplexität bevorzugt wird.

Wichtige Anwendungen von synthetischen Peptiden

Peptid-Arzneimittel

Viele Peptidarzneimittel werden durch chemische Modifikation natürlicher Moleküle gewonnen. Sie sind unverzichtbar zur Behandlung zahlreicher Stoffwechselerkrankungen.

Peptid-Impfstoffe

Impfstoffe sind eine der erfolgreichsten Strategien der modernen Medizin. Klassische Impfstoffe nutzen inaktivierte Erreger, deren Produktion aufwendig ist. Im Gegensatz dazu gelten Peptid-Impfstoffe als kostengünstige, sichere und hochspezifische Alternative.

Peptide für Tissue Engineering

Die Entdeckung von Zelladhäsions- und selbstassemblierenden Peptiden eröffnet neue Chancen im Tissue Engineering. Diese Peptide werden zunehmend als bioaktive Moleküle für Zellwachstum und Geweberegeneration eingesetzt.

Arznei- & Gentransfer

Zellpenetrierende und selbstassemblierende Peptide sind wichtige Bestandteile moderner Gentherapie- und Arzneimittel-Verfahren. Im Vergleich zu viralen Vektoren sind Peptide einfacher zu synthetisieren und machen die Technik weit verbreitet.

Kosmetische Anwendungen

Viele Kosmetikprodukte nutzen die positiven Eigenschaften von kosmetischen Peptiden. Kleine Peptide, die die Hautbarriere durchdringen, werden wegen ihrer regenerierenden Eigenschaften eingesetzt. Peptide mit antimikrobiellen Eigenschaften finden sich auch in Cremes gegen verbreitete Hautprobleme.

Die meistverwendeten Peptidsynthesemethoden

Chemische Synthese Rekombinante Expression Semisynthese
  • Festphasensynthese
  • Flüssigphasensynthese
  • Native chemische Ligation
  • Bakteriensysteme (coli und B. subtilis)
  • Hefesysteme (cerevisiae und P. pastoris)
  • Säuger- oder Insektenzelllinien
Kombination aus synthetischen und rekombinanten Fragmenten durch chemische oder enzymatische Ligation

Festphasen-Peptidsynthese dominiert seit Jahrzehnten den Markt für kundenspezifische Herstellung. Die Methode, ursprünglich in den 1950er Jahren entwickelt, ist zur bevorzugten Technologie in Bezug auf Automatisierung, Kosten, Skalierbarkeit, Lieferzeit und Ausbeute geworden.

Die Synthese erfolgt schrittweise am Festträger von C- zu N-Terminus. Nα-geschützte Aminosäuren steuern den Syntheseprozess und verhindern Nebenreaktionen. Heute kommen zwei Hauptschutzgruppen für den N-Terminus zum Einsatz: Boc (t-Butyloxycarbonyl) und Fmoc (9-Fluorenylmethoxycarbonyl).

Neben den N-terminalen Schutzgruppen werden auch permanente Schutzgruppen an den Seitenketten verwendet. Sie verhindern unerwünschte Verzweigungen und halten mehreren chemischen Behandlungen stand und werden erst am Ende der Synthese durch starke Säuren entfernt. Benzyl (Bzl) und tert-Butyl (tBu) gehören zu den am meisten verwendeten Schutzgruppen für Seitenketten.

Die einzelnen Syntheseschritte:

  1. Entschützen: Die Nα-Schutzgruppen müssen entfernt werden, um eine neue Aminosäure am N-Terminus zu koppeln. Die verwendeten Reagenzien hängen von der Art der Schutzgruppe ab. TFA (Trifluoressigsäure) kommt bei Boc, Piperidin bei Fmoc-geschützten AS zum Einsatz.
  2. Kupplung: Für die Anheftung einer neuen AS am N-Terminus muss die C-terminale Carbonsäure aktiviert werden. Carbodiimide wie Dicyclohexylcarbodiimid (DCC) oder Diisopropylcarbodiimid (DIC) sind gängige Koppelreagenzien.
  3. Abspaltung: Nach mehreren Zyklen müssen alle Schutzgruppen vom neuen Peptid entfernt werden. Starke Säuren wie HF, HBr oder Trifluormethansulfonsäure (TFMSA) werden für Boc/Bzl eingesetzt, schwächere wie TFA für Fmoc/tBu. In diesem Schritt wird das Peptid auch vom Festträger abgetrennt und kann anschließend gereinigt werden.

Da für die Synthese starke Chemikalien erforderlich sind, kann die Reinigung herausfordernd sein. Für GMP-Peptid-Produktionen wird daher mitunter die Flüssigphasensynthese genutzt. Sie ist zeitaufwendiger und ergiebiger als die Festphasentechnik, bleibt aber relevant für die Herstellung hochreiner kurzer Peptide (<10 AS).

Beide Methoden sind chemische Ansätze für die lineare Peptidsynthese. Müssen größere Peptide mit komplexen Strukturen hergestellt werden, ist die rekombinante Expression oft die bessere Wahl. Sie ist jedoch auf natürliche, vom Wirtsorganismus produzierte Aminosäuren beschränkt.

Müssen Peptide mit komplexen Strukturen und unnatürlichen AS erzeugt werden, ist ein semisynthetischer Ansatz ideal.

Die effizientesten Peptid-Reinigungsmethoden

Trotz der Effizienz gängiger Peptidsyntheseverfahren können unerwünschte Verunreinigungen entstehen – etwa durch unvollständige Entschützung, Nebenreaktionen, Verkürzungen oder Isomere.

Die Entfernung dieser Verunreinigungen geschieht mit einer oder mehreren Methoden:

  • Größenausschlusschromatographie
  • Ionen-Austauschchromatographie (IEC)
  • Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC)
  • Reversed-Phase HPLC (RP-HPLC)
  • Gel-Filtration-HPLC

RP-HPLC ist das am häufigsten verwendete Reinigungs­verfahren. Während konventionelle HPLC nach Konzentration polarer Lösungsmittel trennt, fängt RP-HPLC hydrophobe Moleküle ein und gibt sie je nach Hydrophobizität wieder frei. So lassen sich rein synthetisierte Peptide leichter von Verunreinigungen trennen.

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